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Stagiaire Sorbonne Université Paris 05 sur biochimie.enligne-fr.com

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Stage de Master 2 Biochimie et Génétique de l'ARN

Code CV : 5bc7ae6e93e6ebfb
Date de dernière connexion : 2018-10-20

Monsieur Di... HO...
...
91000 Evry
France

Métiers préparés : Biochimie

Ecole: Sorbonne Université
75005 Paris 05

Cycle : 2eme année

Dernier niveau d'etudes validé avec diplome : Bac+5
Dernier diplome : Master Biochimie, Biologie Moléculaire
Niveau d'études actuel : Bac+5
Métiers préparés : Biochimie

Durée du stage : 5 mois, 6 maximum
Début du stage :
2018-01-20 2018-05-20
Temps Plein Oui
Alternance Oui
Mobilité autour de votre lieu d'habitation : 100Km >> ...

Lettre de motivation

Madame, Monsieur,



Etudiant en
Master 2 de Biochimie et Génétique de l’ARN, à Sorbonne Université, je viens
par la présente vous proposer ma candidature pour le stage d’une durée de 6
mois au maximum.



Ayant fait un master en Biochimie, Biologie moléculaire, à la
faculté des sciences et techniques de l’Université d’Abomey-Calavi, j’ai fait
trois ans de stage notamment à l’Unité de recherche en enzymologie de l’ARN de
Science Sorbonne Université. Cette année j'ai décidé de poursuivre mes études en me
spécialisant dans l’ARN. Passionné par la Biochimie, j'aimerais pouvoir plus
tard appliquer à développer mes connaissances
les interactions Acides Nucléiques/Protéines et les conséquences dans la genèse de certaines maladies comme le cancer, et bien d’autres
pathologie.



Mon sens de l'observation, de la méthode, et surtout ma grande patience, sont
autant de qualités susceptibles de répondre à vos attentes.



C'est avec plaisir que je vous exposerai mes motivations pour ce stage. Dans
cette attente, je vous prie de croire, Madame, Monsieur, à l'assurance de
toute ma considération.

CV







COMPETENCES


Biochimie, Biologie Moléculaire

Maitrise des structures, propriétés
physico-chimiques et biologiques des biomolécules (Glucides, lipides,
protéines).Maitrise
des techniques courantes de dosage et d'analyse spectrophotométriques, et les
méthodes de séparation et purification courantes.Maitrise
des technologies courantes de clonage de gènes, de mutagenèse, de mise en
évidence des interactions ADN/protéine et protéine/protéine (techniques
fondamentales de biologie moléculaire).Maitrise
de quelques techniques courantes de microbiologie pour des applications en
contrôle qualité et en biotechnologies.Usage
des banques de données de séquences et de structures protéiques et
nucléotidiques.Usage
des logiciels d'acquisition et d'analyse de données.
Caractérisations & Techniques en
Chimie

Spectroscopies (IR, UV visible,
fluorescence)Spectromètres RMN Spectromètre de masse couplé ou
non avec chromatographesChromatographies (GC, HPLC, par
échange d'ions, ...)Caractérisation par rayonnement
X : diffraction à hautes et basses températures, fluorescence, etc...
(poudres et cristaux)
Synthèses Chimiques

Méthodes classiques de synthèse
organique : hydrogénation, réduction, oxydation, alkylation, acylation,
cyclisation, estérification, sulfonationSynthèses de polymères -
micropilote de polymérisationSynthèses minéralesChromatographes préparatifsElectrosynthèses


EXPERIENCES
PROFESSIONNELLES


o
Octobre 2016-Janvier 2018 (2 ans) : Unité de Recherche en Enzymologie (UPMC-Paris 6)



Poste occupé :
Ingénieur Biochimiste


Etude de
l’interaction entre la protéine eL42 et
les thiosemicarbazones actives par la technique SPR en utilisant le Biacore
3000


Etude
de l’activité in vitro de thiosemicarbazones sur les souches cellulaires HeLa
(cellules cancéreuses) et HEK (cellules normales)




o
Novembre 2015-Septembre 2016 (1 an) : Unité de
Recherche en Enzymologie (UPMC-Paris 6)

Poste occupé : Ingénieur Biochimiste


Etude in vitro de l’activité antitumorale d’une
série de thiosemicarbazones sur la protéine eL42 de la grande sous-unité du
ribosome humain comme biomarqueur surexprimée dans les cellules cancéreuses.


Etude in
vivo de l’activité antitumorale de thiosemicarbazones actives sur sur les souches cancéreuses
HeLa et les cellules souche embryonnaires normales HEK afin d’apprécier le
pouvoir sélectif des composés.

o
Août 2010-Septembre 2015 (5ans) : Laboratoire de Chimie Pharmaceutique et Organique
(Cotonou, Bénin)



Poste occupé :
Technicien Biochimiste


Hémisynthèses
et Synthèses de molécules(thiosemicarbazones)/Caractérisations (CCM, RMN H et
13C, SM, HPLC, CPG) /Recherche d’activités biologiques des produits de
synthèses (antibactériennes, antidiabétique, antiparasitaire, et
anticancéreuse)



CURSUS
ET FORMATIONS ACADEMIQUES
2018-2019: Master 2 Biochimie et Génétique de l'ARN(en cours)

o
2017-2018 : Stage Professionnel à l’UR6-Sorbonne
Université(Campus Jussieu, France)

o
2016-2017 :
Stage Professionnel à l’UR6-Sorbonne Université(Campus Jussieu, France)

o
2015-2016 : Stage Professionnel à l’UR6-Sorbonne Université(Campus Jussieu, France)

o
2011-2012 : Master 2 en Biochimie, Biologie Moléculaire
- UAC (Bénin)

o
2009-2010 : Licence 3 en Biochimie, Biologie Moléculaire
- UAC(Bénin)

o
2007 :
Bac S (Mathématiques-Physiques-Biologie) - UAC (Bénin)





ATELIERS,
FORMATIONS ET RENCONTRES SCIENTIFIQUES
o
14-15 Décembre 2017 : Participation aux 37 èmes Journées de
l’Hypertension Artérielle (JHA) organisées par la Société Française de
l’Hypertension Artérielle(SFHA) tenues à la cité Universitaire de Paris, 75014(45B,
Boulevard Jourdan Paris)

o
07 Décembre 2017 : Participation à la 5ème
Rencontre Française BiacoreTM qui
s’est tenue au siège du GE Healthcare
Life Sciences (24 Avenue de l’Europe, CS 20529, 78140
Vélizy-Villacoublay-France).

o
Novembre 2017 : Participation aux
21èmes Journées Jeunes Chercheurs en Cancérologie de la Fondation ARC pour la
Recherche sur le Cancer qui se sont déroulés à l’hôtel des Arts et Métiers au 7
bis avenue d’Iéna, Paris 16ème.Paris (France).

o
Novembre 2015-Mars 2017 : Formation
à l’Institut de Biologie Paris sur Seine (IBPS) de l’Université Pierre et Marie-Curie
(Parie 6) sur la plateforme utilisant le Biacore 3000 dans l’analyse et la caractérisation des interactions entre
biomolécules (protéines, peptides, acides nucléiques, lipides sucres, petites
molécules...) sans marquage et en temps réel, par Résonance de Plasmon de
Surface (SPR).

o
Aout 2016 : Participation aux 17èmes Journées Scientifiques
annuelle de la SOACHIM (Société Africaine de Chimie) à Cotonou(Bénin).

o Avril
2015 : Participation au colloque « Chimie et Ressources
Naturelles » organisé à Cotonou par
l’Académie Nationale des Sciences, Arts et Lettres du Bénin (ANSALB) et le
comité pays en Développement (COPED) de l’Académie Nationale des Sciences de
France.

o
Février 2015 : Communication
présentée sur le thème : Activité antitrypanosomiales
de thiosemicarbazones hémisynthétisées sur trypanosoma
brucei brucei, au premier Colloque International de Chimie Thérapeutique
tenu à la Faculté des Sciences de la Santé(FSS) à Cotonou au Bénin



o
Décembre 2011 : Atelier de formation sous
régionale sur la Biologie Moléculaire et les Biotechnologies Végétales déroulée
à l’Institut des Sciences Biomédicales Appliquées (ISBA), Cotonou, Bénin.





LANGUES
ET CONNAISSANCES INFORMATIQUES
o
Français

o
Anglais


o
Maitrise des logiciels de bureautique
Pack Office (world, Excel, PowerPoint, OneNote.)

o
Chemdraw (logiciel utilisé pour la
construction des molécules et conception des réactions moléculaires, UCSF Chimera (logiciel utilisé
pour les Amarrages Moléculaires)




AUTRES
CENTRES D’INTERETS
o
Divers : football, lecture, chorale,
Musique, Piano.




ATTESTATION
Je soussigné, certifie
en toute conscience, que les renseignements fournis ci-dessus rendent
fidèlement compte de ma situation, de mes qualifications et de mes expériences

Divers

Outils / Logiciels / Méthodes maitrisés : INFORMATIQUE Microsoft Office (Word, Excel, Powerpoint, Publisher). Logiciels: Chemdraw, UCSF Chimera Méthodes maitrisées -Structures, propriétés physico-chimiques et biologiques des biomolécules(ADN, ARN, Protéines, lipides, glucides) -Analyse spectrophotométriques, et les méthodes de séparation et purification courantes. -Clonage, mutagenèse, interactions ADN/protéine et protéine/protéine -Microbiologie pour des applications en contrôle qualité et en biotechnologies. -Banques de données de séquences et de structures protéiques et nucléotidiques. -Usage des logiciels d'acquisition et d'analyse de données. -technique du western blotting,

Permis VL, PL, véhicules spéciaux : B

Langues :
Français : Langue maternelle
Anglais : Avancé

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(Anonyme)
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